의료법인 케이씨엘의료재단

검사의뢰 안내
01

진단검사의학이란 인체에 유래하는 일체의 검사물을 검사하여 환자의 진료에 도움을 주는 학문입니다.
따라서 인체에서 유래하지 않은 검사물이거나 그 목적이 다른 검사업무는 원칙적으로 본원에서는 취급하지 않습니다.

02

본원에서 실시하는 일체의 임상검사는 의뢰기관 의사의 의뢰가 있어야만 접수됩니다.

03

검사물을 의뢰하시는 기관에서는 본원에서 제공하는 검사의뢰지(OMR지)의 원하는 검사명 □칸에 V, X，/ 표 등을 진한 검정색 펜으로 표시합니다.

04

검사의뢰지에는 다음 사항이 반드시 명시되어야 합니다.
※ 환자의 인적사항은 정확히 기록하여야 합니다.
환자성명, 성별, 나이, 의뢰기관, 기관기호, 발행일자, 발행의사, 검체명, 검체채취일시, 임상 소견 등

05

의뢰기관에서는 채혈시, 채혈용기에 부착된 라벨에 의뢰기관, 환자성명 등을 정확히 기재하여야 합니다.
라벨이 붙어있지 않은 용기는 별도의 라벨에 적어 붙입니다. ( 동명이인의 경우가 많으므로 반드시 의뢰기관과 기호를 기재하여 주십시오 )

06

본원 검사실에서는 검사의뢰의 편의를 위해 Profile 검사를 실시하고 있습니다.
임상검사 종목 중에서 검사종목을 각각 의뢰하지 않더라도 해당 profile을 의뢰하면 몇 가지 검사가 동시에 의뢰됩니다.
※ 본원에서 구성한 Profile 외에도 의뢰병원에서 원하시는 대로 Profile 구성이 가능하시니 필요하신 경우 본원 영업부 직원과 상의하시기 바랍니다.

07

검체 종류에 따라 적절하고 충분한 양의 검체를 지정 용기에 채취하여야 합니다.

08

동일한 환자에서 한 가지 이상의 검체 종류를 의뢰하는 경우, 라벨에 각각의 검체명과 검사명을 적어 주십시오.
동일한 환자에서 시간별로 연속적으로 채취한 검체는 채취시간, 날짜, 번호를 정확히 기록하여 주십시오

09

본원 검사실에서 실시하지 않는 검사항목은 국내 전문기관이나 대학병원 등에 위탁하여 처리하여 드립니다.

10

특수검사에 사용되는 Tube나 용기 등은 필요시 본원에서 제공합니다.

11

동일한 환자에서 시간별로 연속적으로 채취한 검체는 채취시간, 날짜, 번호를 정확히 기록하여 주십시오.

본 안내서에 명시되지 않은 사항은 일반적인 관례에 따르며 언제나 환자를 진료하시는데 불편이 없도록 최선을 다할 것입니다.

가. 혈액 검체 채취

  • 01혈액 성분은 운동, 식사, 정신적 스트레스 등에 의해 영향을 받는 경우가 많으므로 채혈은 일반적으로 아침 공복시에 하는 것을 원칙으로 합니다.
  • 02검사항목 및 목적에 따라 해당되는 검체용기에 채혈 합니다.
  • 03채혈이 끝나면 주사바늘을 제거하고 각 검사용기에 기벽을 따라 혈액이 흘러내리도록 서서히 분주합 니다.
  • 04항응고제를 사용한 용기의 혈액은 혼합이 잘 되도록 천천히 충분하게 10회정도 아래 위로 뒤집으며 혼합합니다.
  • 05특히, 각 항응고제 용기가 지정한 혈액량을 정확히 지키는 것이 혈액의 응고도 막고 정확한 결과를 얻을 수 있습니다.
  • 06일반적으로 여러 종목의 검사(전혈, 혈청, 혈장 등 사용)를 위하여 동시에 채혈할 때는 채혈량을 미리 계산해 두어야 합니다.
    이때 각 검사에 따라 정해진 용기에 분주해야 하며 미량의 혈청이 필요한 경우라도 한 용기당 최소 2-3ml의 혈액을 넣어야 합니다.
    ※ 전혈 해당 검사에 필요한 혈액량을 채취 혈장 또는 혈청 필요량의 3배 이상의 혈액 채취

채혈순서

· 여러 종류의 tube가 요구될 때는 다음 순서에 의해 채혈하십시오. · 이 채혈 순서는 플라스틱 진공 채혈 tube (vacutainer) 사용 시 적용됩니다.
01 혈액배양 tube
02 Coagulation tube
(blue stopper,
citrate tube)
03 SST-II
(yellow-red stopper,
gel separation tube)
or Nonadditive tube
(red stopper, plain tube)
04 Heparin tube
(green stopper)
05 EDTA K3 tube
(lavender stopper)
06 Oxalate /
fluoride tube
07 Other
(각종 전용용기)
Blood culture 체액 & 흡인세포검
Sodium citrate 파란색
SST 노란색
Heparin 연두색
EDTA bottle 보라색
Sodium fludoride 회색

채혈시 주의사항

  • · 채혈 시에는 Tourniquet를 1분이상 묶어 울혈(혈액이 농축됨) 되지 않도록 주의하고, 적당한 속도로 거품이 생기지 않도록 합니다.
  • · 항응고제에 채혈하는 혈액은 충분히 혼합되지 않으면 육안으로 잘 보이지 않는 미세 응고가 생겨큰 오차를 초래하므로 주의합니다.
  • · 소량의 EDTA가 Plain tube에 오염되어도 Calcium이 필요한 Enzyme 측정은 매우 부정확한 결과를 초래하므로 주의합니다.
  • · 채혈이 힘들고 오래걸리면 미세 응고의 가능성이 있어 Cell count 등의 검사항목이 불가능 할 수있으며 용혈이 생길 우려도 있으므로 혈청 사용 검사항목 중 용혈이 검사에 영향을 주는 생화학검사 항목 등도 불가능 할 수 있습니다.
  • · 혈액응고 검사 의뢰용 혈액에 조직액 (Femoral puncture etc, 채혈이 힘들고 지체된 경우)이 다량 섞이거나 항응고제와 혈액의 비율이 부적당하면 환자 상태와 전혀 다른 결과가 나올 수 있습니다.
    ※ PT, APTT등 검사 결과에 이상이 있을 경우, 제일 먼저 검체 채취 방법의 적절여부를 고려해야 합니다.
  • · 당일 검사할 수 없는 검체는 혈청분리하여 -20℃ 냉장고에 동결하거나 최소한 냉장보관 하여야 합니다.

용혈을 방지하기 위한 주의사항

용혈에 의해 검사가 불가능 하거나 오류가 발생할 수 있으므로 채혈 시 용혈 방지를 위해 다음 주의사항을 꼭 지켜주십시오. 용혈된 혈청을 사용할 경우
▲ LDH GOT, GPT, Potassium, IP 는 증가하고 ▼ Glucose, Sodium 등은 감소합니다. · 채혈 후 주사침을 제거한 후 검체 용기의 기벽에 따라 서서히 주입합니다. 특히 Vacutainer에 직접 바늘을 꽂아 옮길 경우 진공으로 인한 압력 때문에 더욱 쉽게 용혈 되므로 주의해야 합니다. · 극도의 고온이나 동결을 피합니다. 동결되지 않더라도 4℃ 이하면 용혈 되기 시작하므로 냉장고 보관 시, 냉기가 나오는 곳을 피하여 아래 야채실 등 6-8℃ 정도로 보관합니다.

나. 검사의뢰서 작성

의뢰항목에 적합한 KCL 전용의뢰서를 사용하여 필요한 내용을 반드시 기록하여 주십시오. 각 기재사항은 검사과정 또는 검사결과산출에 중요하게 활용될 것입니다.
01. 검사종목 의뢰지의 검사항목에 V 표시,
의뢰지에 없는 검사는 기타란에
검사명, 검사방법 기재
02. 의뢰기관 기관명, 진료과, 담당의사
03. 환자정보 환자명, 성별, 나이,
임신정보(여자), 차트번호등
04. 검체 검체 종류, 부위(세포, 조직, 미생물),
채취일 및 시간, 의뢰일 등
※ 기관명, 환자명, 생년월일, 차트번호 필수

다. 검체 제출과 수송방법

검체 제출 및 수송과정에 특별한 주의가 필요한 검체 (예 : 냉장 운반, 즉시 운반)는 KCL 검사안내의 검사항목별 지침내용을 따라주십시오.
검체는 원내 진단검사의학과를 통하여 KCL 직원에게 제출하여 주십시오.
제출된 검체는 즉시 수거되어 당일에 본사 운송 및 검사가 이루어집니다.

라. 검사결과의 보고

  • 01 검사결과는 의뢰하신 병원에서 인터넷을 통하여 실시간 조회가 가능합니다. 결과지가 필요한 경우 KCL 지역 고객지원센터의 전산 on-line 망을 통하여 출력되며, 결과지 양식은 당사 전용양식입니다.
  • 02 기타 응급을 요하는 경우는 전화로 확인할 수 있으며, 팩스 이용도 가능합니다.

바. 재검사 및 추가검사 요청

재검이나 추가검사 요청 시 1주 이내에 KCL 고객지원센터로 신청하여 주십시오. 고객지원 센터에서는 재검 및 재채취 검체인 경우 의뢰서와 함께 본사로 송부하며, 추가검사는 전산 처리합니다.
매일/1일 소요되는 검사인 경우, 정오 12시 이전까지 접수된 검사는 당일 오후 6시까지 보고되며, 정오 12시이후 접수된 검사는 다음날 오전 8시30분까지 보고 완료됩니다.
주의사항
  • ① 스케줄 검사 종목은 KCL 검사안내의 검사항목별 검사일 및 소요일에 따라 검사가 이루어집니다.
  • ② 검체가 심하게 오염되거나 변성되었으면 검사를 실시할 수 없습니다. 이 경우는 검체를 재채취 하도록 요청합니다.
  • ③ 검체량이 부족하면 재검 및 추가 검사가 불가능합니다.
  • ④ 응급을 요하는 경우나 기타 문의사항은 고객지원센터로 문의하시기 바랍니다.

사. 검사 외부 위탁 제도

본원에서 실시되지 않는 검사는 국내 전문 기관 등에 위탁하여 실시합니다. 이 경우 검사 종목에 따라 2-4주 정도 시일이 소요되오니 고객지원센터로 문의하시기 바랍니다.
혈액 Blood 요 Urine 분변 Stool 체액 Body Fluid

채혈시기

혈액 성분은 운동, 식사, 정신적 스트레스 등에 의해서 영향을 받는 경우가 많아, 일반적으로 아침 공복 시에 채혈하는 것이 원칙입니다.
격심한 운동 후에는 충분히 안정을 취한 다음 채혈하며, 동일한 환자에게서 같은 검사를 반복하는 경우에는 같은 시각, 같은 조건하에서 채혈하는 것이 바람직합니다.

01검사결과에 영향을 미치는 생물학적 혹은 생리적 변동 요인들

개인 간 변동
유전 · 개인차
· 성별
· 인종
생활환경 · 지역 · 식습관 · 흡연 · 직업
시간 · 연령
개인 내 변동
시간 · 일 내 변동
· 일 간 변동
· 계절에 따른 변동
행동 · 식사
· 체위
· 운동
생리 · 검체채취 부위
· 성주기
· 임신

02식 후 측정치가 변동하는 검사항목

증가

요량, 요당, 혈당, Triglyceride, Uric acid, Lipoprotein (LDL, VLDL), Amylase, Total lipid, Catecholamine, Insulin, Aldosterone, VMA, Vitamin

감소

Glucose를 제외한 요 중 성분 농도, Hemoglobin, Hematocrit, WBC count, Total protein, Albumin, Serum iron, Growth hormone

03운동 후 측정치가 변동하는 검사항목

증가

Blood cell, Hematocrit, Hemoglobin, Total protein, Lactic acid, Triglyceride, Free fatty acid, AST, ALT, LDH, CK, Growth hormone, Sodium, Chloride,
Whole blood specific gravity, Urine RBC, Urine urobilinogen

감소

Amino acid in blood, Renal clearance, Potassium, GTT, Urine calcium, Magnesium

04용혈에 의한 검사결과의 변동

증가

Total protein, A/G ratio, Potassium, Chloride, Inorganic phosphorus, Iron, Amylase, AST, ALT, LDH, Cholesterol

감소

Bilirubin, Lipase, ACP

채혈 준비

01환자 준비사항 및 인적사항 확인(patient identification)

  • 01 채혈하기 전 환자에게 채혈할 것을 충분히 설명해야 합니다.
  • 02 환자 이름, 생년월일, 병원 등록번호, 성별 등 반드시 2개 이상의 개방형 질문을 통해 환자 확인을 철저히 합니다.
  • 03 의식이 없거나 너무 어린 아이, 인지장애 환자의 경우 반드시 간호사, 보호자, 동반자 등을 찾아서 환자 정보를 확인합니다.
  • 04 채혈하고자 하는 환자의 손목/발목 띠 또는 검사의뢰서를 반드시 확인합니다.
  • 05 환자 확인 과정에서 문제 발생 시 채혈을 보류합니다.

02검체 라벨링 부착 및 확인

  • 01 검체용기에는 적어도 2개의 식별자가 라벨링이 되어 있어야 합니다.
  • 02 환자 정보와 바코드 정보를 확인 후 검체용기에 바코드가 떨어지지 않도록 완전 밀착하여 부착하며, 구겨지거나 파손된 바코드는 자동화 분석이 불가능하므로 사용하지 않습니다.
  • 03 검체가 2개 이상인 경우 바코드를 검체 수만큼 출력하여 각각의 검체용기에 바코드를 부착해야 합니다.
  • 04 채취부위 또는 채취 시간이 다른 동일 종류의 검체로 동일 종목의 검사를 의뢰할 경우에는 각각 서로 다른 바코드를 부착해야 합니다. 바코드가 동일하면 각각 독립된 작업번호가 부여되지 않아 제대로 검사가 될 수 없습니다.
  • 05 튜브 형태의 검체용기는 바코드 리더기가 읽기 용이하도록 세로 형식으로 부착하며, 검체 상태와 검체량확인이 가능하도록 바코드를 부착합니다.
  • 06 채혈하고자 하는 환자와 부착된 검체 바코드의 환자 이름, 병원 등록번호 등을 비교하여 다시 한번 확인 후 채혈을 합니다.

올바른 바코드 부착법

다수 검체 바코드 부착법

다수 바코드 부착법

채뇨 방법

01일반뇨검사를 위한 단회뇨(random urine, RU)

아침 첫뇨의 중간뇨는 하루 중 가장 농축된 상태이며, 산성이 강해서 원주(casts)나 기타 요(urine) 구성물이 잘 유지되므로 일반 요검사나 현미경적 검사에 가장 적합합니다.
반드시 식후 2시간 이상 경과된 후, 심한 운동을 하지 않은 상태에서 채뇨하고 검사 전까지 냉장 보관합니다.

02정량검사를 위한 24시간 축뇨(24 hours urine, 24hU)

하루 중 그 배설이 일정치 않은 호르몬, 단백 및 전해질 등을 정량하고자 할 때에는 24시간 축뇨가 필요합니다.
지정된 시간(예: 오전 8:00)의 첫뇨는 버려 방광을 비우고, 그 이후부터 다음날 지정된 시작 시간 (오전 8:00)까지의 모든 소변을 용기에 모읍니다.
이때 주의할 점은 대변볼 때 나오는 소변도 모아야 합니다. 소변은 냉장 보관을 하면서 모으고, 만약 채뇨 중 100mL이상 검체가 유실된 경우에는 처음부터 다시 검체를 모읍니다.
모아진 소변은 총 축뇨량을 기입하고 잘 혼합하여 검사 시필요량(약 50mL)을 채취하여 검사실로 보냅니다.

03세균배양을 위한 채뇨

무균적 중간뇨(clean voided midstream urine)가 적절하나, 필요 시에는 도관법(catheterization) 이나 치골상부 흡인법(suprapubic aspiration)도 사용됩니다.
채뇨 즉시 실시해야 하지만 불가피할 경우 배양할 때까지 냉장 보관합니다. 성병 관련 검사일 경우 처음에 떨어지는 소변(first-voided urine)을 채취합니다.

단회 분변 Stool

2~3g의 대변을 멸균된 플라스틱 용기에 채취합니다.

24시간 분변 24 hours stool

채취한 검체의 총 무게를 측정 한 후 검체 내용물을 균등하게 혼합합니다. 멸균된 플라스틱 용기에 검사에 필요한 적당량(약 4~5g)을 채취한 후 밀봉하여 냉장 보관하고, 검사의뢰서와 용기에 채취 시간과 총
무게를 기재합니다.

뇌척수액 Cerebrospinal Fluid, CSF

감염, 악성종양, 지주막하출혈 등의 진단에 사용되는 뇌척수액은 요추천자를 통해 채취되며, 일반적으로 3개의 무균용기에 각각 2.0~4.0mL씩 차례대로 받아 검사에 이용합니다.
처음에 나오는 뇌척수액은 피부조직 파편이나 피부 세균에 의해 오염될 수 있으므로 화학적 또는 혈청학적 검사를 위해 사용 하고 두 번째는 세균검사, 세 번째는 세포수 측정과 같은 혈액학적 검사에 이용합니다.

양수 Amniotic Fluid, AF

01채취 시기

양수검사는 양수의 양 및 배양 가능한 세포수를 적절히 얻을 수 있는 임신 16~20주경에 천자를 시행하며 채취된 소량의 양수를 배양하여 염색체 검사 및 생화학검사를 시행합니다.

02천자 방법

초음파로 태아와 태반의 위치를 확인해가면서 복부 피부를 국소 마취한 후 가느다란 바늘을 이용하여 천천히 양수를 흡입하여 채취합니다. 채취 전 과정은 무균상태로 실시해야하며, 채취 된 양수는 검사 필요량을 멸균용기에 옮겨 담아 밀봉하여 즉시 검사실로 보냅니다.

03주의사항

양수 채취 시 모체 혈액이 오염되거나 15주 이내의 너무 이른 채취 및 양수세포가 적은 경우 등검체가 불량인 경우에는 양수를 다시 채취할 수 있습니다.

관절액 Synovial Fluid

세개의 시험관으로 나누어 무균관은 미생물검사에, 항응고제를 포함한 시험관은 혈액학적 검사에, 나머지 관은 생화학적 검사에 사용합니다.

모발 Hair

01채취 방법

02주의사항

  • 01 염색, 퍼머, 탈색한 머리카락은 최소 2개월이 지난 후부터 표본으로 사용 가능합니다.
  • 02 기능성 샴푸(탈모방지 등) 사용 시 최소 2~3주 후 검사가 가능합니다.
  • 03 화학성분이 함유된 제품(스프레이 등)은 검사 당일 사용하지 않습니다.
진단검사 유전학검사 병리검사

가. 진단혈액

01일반혈액검사

  • 01 혈액 3.0mL을 채취하여 EDTA 용기에 넣고 용기를 위 아래로 5~10회 정도 전도혼합 하여 항응 고제와 혈액이 충분히 섞이도록 합니다. 이때, 항응고제(EDTA)와 혈액량의 비율이 적합하지 않거나, 혼합이 불충분할 경우 미세한 응집이 생겨 세포수 계산 등 검사결과의 오차가 발생할 수 있으므로 주의합니다.
  • 02 검사는 2시간 이내에 이루어져야 하지만 즉시 검사할 수 없을 경우에는 4℃에서 냉장 보관하며, 24시간까지는 CBC 결과가 안정합니다.
  • 03 실온에서 6시간 이상 방치 시 MCV, ESR, PLT, WBC count, reticulocyte (2일 내 소실) 등결과에 영향을 미칠 수 있습니다.
  • 04 냉동 보관된 검체는 분석이 불가능합니다.

02혈액도말검사(PB Morphology)

  • 01 신선한 혈액을 사용하여 얇고, 고르게 도말 슬라이드를 제작합니다.
  • 02 도말의 길이는 약 3~4cm가 좋으며 세포 변형을 초래할 수 있으므로, 슬라이드는 신속하게 건조시켜야 합니다.
  • 03 실온에서 6시간 이상 방치 시 MCV, ESR, PLT, WBC count, reticulocyte (2일 내 소실) 등결과에 영향을 미칠 수 있습니다.
  • 04 냉동 보관된 검체는 분석이 불가능합니다.

03혈액응고검사(Blood Coagulation test)

  • 01 단독 의뢰 시 첫 번째 채혈한 검체는 폐기하고 두 번째 채혈한 검체로 검사하며, 다른 검사와 함께 의뢰된 경우 두 번째 혹은 세 번째로 채혈한 검체를 사용합니다(채혈 시 조직액이 미량 섞이는 것을 방지하기 위함).
  • 02 헤파린 오염의 우려가 있는 카테터(catheter)로 채혈하는 경우 5.0mL 또는 catheter dead space volume의 6배를 뽑아낸 후 검체를 채취합니다.
  • 03 PT는 24시간, APTT는 4시간, 다른 응고검사는 4시간 이내에 검사를 시행하는 것이 원칙이지만 불가능할 경우 혈소판 결핍 혈장(platelet poor plasma, PPP)을 분리하여 냉동 보관합니다 (-20℃에서 14일 동안 안정).
  • 04 Hct의 값이 45%일 때, 항응고제와 혈액량의 비율은 1:9로 채혈합니다. Hct의 값에 따른 항응고제와의 비율은 다음 표와 같습니다.
Hct 결과에 따른 항응고제와 혈액량의 비율
Hct 6% 20% 30% 45% 55% 63% 70%
Ratio 1:5 1:6 1:7 1:9 1:11 1:13 1:16

04세포면역검사(Lymphocytes Subset)

  • 01 K2 EDTA 용기를 사용하여 3.0mL을 채취한 후 반드시 실온 보관하며, 토요일 및 주중 공휴일 전날 검체 접수를 삼가하여 주시기 바랍니다(검체에 검체채취 일시 기재).
  • 02 4℃ 보관 또는 림프구 분리 후 보관은 양성률이 낮으며 CD8 세포에 비하여 CD4 세포가 저하될수 있습니다.

05결핵균 특이항원자극 INF-γ 검사

  • 01 전용용기는 4~25℃에서 보관하며, 냉장 보관 시 사용 1시간 전에 실온에 두었다가 사용합니다.
  • 02 전용용기(3개의 용기)에 환자이름과 채취 시간을 기입합니다.
  • 03 반드시 회색(Nil) → 빨간색(TB Ag) → 보라색(Mitogen)용기 순서로 1.0mL씩 채혈 후(검은 선까지) 즉시 전용용기 벽면의 내용물(antigen)이 혈액과 잘 섞일 수 있도록 상하로 10회, 또는 5초 동안 반복 혼합합니다.
  • 04 반드시 세워서 16시간 이내에 본원에 도착하여야 합니다.
  • 05 채혈 허용범위를 벗어날 경우(0.8mL 미만 혹은 1.2mL 이상) : 0.8mL 이하인 경우 리듐헤파린 용기로 추가 채혈해서 보충 가능하나 1.2mL가 넘을 경우 재채혈을 해야 합니다. (검체 용기의 검은 선까지가 채혈 용기의 코팅물질과 혈액이 반응할 수 있는 최적의 범위이므로 반드시 준수)

나. 임상화학

01산전기형아검사

산전관련검사 의뢰서의 기재사항은 반드시 작성하여 첨부합니다.
: 생년월일, 체중, LMP, 임신 주수(LMP, 초음파), 과거력(Down, NTD, IDDM 등), NT(nuchal translucency), 재검 의뢰시 1차 결과, 기타소견 등. 임신주수(시기)별 검사 종류
검사시기 분류 검사항목 검체량
임신 10~13주 선별검사 First double marker (PAPP-A, MS-HCG) 혈청 1.0mL
Integrated test 1차(PAPP-A)
Sequential test 1차(PAPP-A, MS-HCG)
임신 14~22주 선별검사 Triple test (AFP, uE3, hCG) 혈청 1.0mL
Quadruple test (AFP, uE3, hCG, Inhibin-A)
Integrated test 2차(AFP, uE3, hCG, Inhibin-A)
Sequential test 2차(AFP, uE3, hCG, Inhibin-A)
임신 15~22주 생화학
정밀검사		 AFP (양수) 양수 2.0mL
Acetylcholinesterase 정성 양수 3.0mL

다. 선천성대사이상검사

01채취시기

  • 01 건강한 신생아의 가장 이상적인 채혈 시기는 48~72시간(일반적으로 퇴원 전 채혈) 사이에 하는 것이 좋습니다.
  • 02 특정 아미노산의 혈중 증가율은 질환의 심각성이나 단백질 섭취량에 따라 달라지므로 너무 일찍 검사를 실시하는 경우 위음성을 초래하며, 정상 신생아는 출생 직후 TSH의 갑작스런 증가(surge) 가 있어 출생 후 48시간 이전에 채취한 검체에서 갑상선기능저하증에 대한 위양성 결과를 초래할수 있습니다.
  • 03 입원 기간이 연장되는 미숙아 등에서는 생후 7일 정도에 검체를 채취하는 것이 좋으며, 입원일이 14일을 초과하는 경우는 퇴원 시, 1개월 이상일 경우는 1개월째 재검을 하는 것이 바람직합니다.
  • 04 수혈이 필요한 경우는 가능하면 수혈 받기 전 초기 검체를 채취하도록 합니다. 이때, 생후 24시간 이내인 신생아는 생후 30일 및 60일에 재검을 실시하는 것이 좋습니다. 또한, 채혈지에 수혈 후 검체를 채취하였다는 내용과 함께 가장 최근 수혈한 날짜를 반드시 기재하여 의뢰합니다.

02채취방법

혈액여지(blood paper)를 이용하여 신생아 발뒤꿈치의 모세혈관에서 혈액을 채취합니다.
  • 01 발에 혈류를 증가시키기 위해 다리를 심장보다 아래쪽에 위치하도록 하고, 3분 정도 따뜻한 물수건 으로 뒤꿈치를 감싸 발을 따뜻하게 합니다.
  • 02 발뒤꿈치의 외측부를 소독한 일회용 란셋(2.4mm point 이하)을 이용하여 천자합니다.
  • 03 처음 나온 혈액 한 방울을 닦아 낸 후 혈액여지의 한쪽 면을 발뒤꿈치의 혈액방울에 접촉한 후뒷면까지 혈액이 충분히 스며들었는지 확인합니다.
  • 04 혈액여지 4개의 원에 가득 차게 혈액을 스며들도록 채혈합니다.
  • 05 채혈이 끝난 혈액여지는 표면에 오염물질이 없는 평평한 곳에서 3~4시간 정도 충분히 건조 시킵 니다.
  • 06 혈액여지가 완전히 건조되면 검체 비닐봉투에 넣어 의뢰합니다.

03주의사항

  • 01 오염을 막기 위해 혈액여지에 그려진 원을 손으로 절대로 만져서는 안됩니다.
  • 02 물이나 알코올, 방부제, 로션, 파우더 등에 닿지 않도록 주의합니다.
  • 03 혈액여지를 채혈부위에 대고 누르거나, 채혈부위를 쥐어짜면 안됩니다.
  • 04 Capillary 용기를 사용하여 채취하면 불충분하고 균일하지 못한 혈액 흡수의 원인이 되므로 사용 하면 안됩니다.
  • 05 혈액을 혈액여지 한쪽 면에만 묻혀 스며들도록 합니다.
  • 06 혈액여지는 오염물질이 없는 평평한 곳에서 실온상태로 3~4시간 정도를 충분히 건조합니다. 수직으로 달아두거나 세워서 건조 또는 보관하면 혈액성분이 흘러내려 혈청분리가 일어날 수 있습니다.
  • 07 혈액여지가 열이나 직사광선에 직접적으로 노출되지 않도록 합니다.
  • 08 혈액 여지가 완전히 건조되기 전에는 봉투 속에 넣지 않습니다. 충분히 건조하지 않고 비닐백이나 봉투에 밀봉하면 혈청 분리 혹은 균류나 곰팡이 증식 원인이 될 수 있습니다.
  • 09 환자 정보가 빠짐없이 기재되었는지 확인합니다(17-OHP의 경우 반드시 출생 시 체중이 필요).
  • 10 건조가 완료된 혈액여지는 가능한 24시간 안에 검사실로 보냅니다.
  • 11 바코드는 혈액여지 앞면의 blood spot 밑면에 위치하도록 부착합니다.

04채혈 예시

  • 적합 검체 : 혈액여지 4개의 원이 가득 차고, 앞·뒷면에 혈액이 충분히 흡수

앞면

뒷면

  • 부적합 검체

혈액여지의 건조 부족

응고 혹은 층이 진 경우

  • 혈액량 부족

원이 혈액으로 채워지지 않은 경우

뒷면까지 충분히 흡수가 안되 경우

  • 오염이 된 경우

라. 임상 미생물

세균검사 바이러스 배양검사

01준수사항

  • 01 정확한 감염부위와 적절한 시기에 채취해야 합니다.
  • 02 모든 검체는 지정된 멸균용기에 채취하고 분변 이외의 검체는 무균조작으로 시행되어야 하며 면봉, 시험관, 수송배지, 혈액배양배지 등은 사용 전에 오염 여부나 유효기간을 확인한 후 사용합니다.
  • 03 혈액배양배지, 수송배지는 실온에 보관하며, 수송배지로 검체를 보낼 때는 반드시 2개의 면봉 모두에 검체를 잘 묻혀서 건조되지 않도록 배지에 깊이 찔러 넣어 보냅니다.
  • 04 임상소견, 검체종류 및 채취부위와 시간, 항생제 투여 여부를 기재하여야 하며 검체채취는 통상적 으로 항생제 투여 전에 합니다(기재된 정보에 따라 1차 접종배지의 종류, 배양조건, 동정을 요하는 균의 종류 등이 달라질 수 있으므로 반드시 기재합니다).
  • 05 수송배지를 즉시 배양할 수 없을 때는 냉장보관하여 운송합니다. 단, 수막구균이나 임균 등의 Neisseria 균속이나 Haemophilus 균속이 의심되는 검체는 30℃ 이하로 내려가면 사멸하므로 실온이나 37℃에 보관합니다.
  • 06 혈액배양용기에 붙어있는 바코드가 보존되도록 발행된 바코드를 다른 위치에 세로로 부착합니다 (그림 A).
  • 07 균주 검체를 의뢰할 경우 균주를 확인할 수 있도록 사면을 가리지 않는 위치에 바코드를 부착하여 의뢰합니다(그림 B).

그림A

그림B

02검체별 채취 방법

  • 01 혈액(blood)
    • ① 검체채취 시 피부 정상균의 오염을 방지하기 위해 피부소독용 알코올, 요오드액으로 소독 후충분히 건조하여 채혈하는 것이 중요합니다.
    • ② 항생제 사용 전에 채혈하여야 하고 일반적으로 발열 주기를 예측할 수 있는 경우는 발열 직전에 채혈합니다. (예측이 어려울 경우에는 발열 시 채혈합니다).
    • ③ 동시에 혈액채취를 시행하는 방법이나, 24시간까지 시차를 두고 시행한 방법 간에 양성률의 차이가 없다고 보고됨에 따라 채혈은 동시에 하거나 짧은 시차를 두고 2~3회 실시하는 것이 권장됩니다.
    • ④ 회에 혈액 20.0mL을 채취하여 호기성 배지와 혐기성 배지에 각각 10.0mL씩 접종을 권장 합니다. 혈액이 많을수록 양성률이 높아지기 때문에 충분한 혈액량을 접종합니다. (소아인 경우 2.0~4.0mL을 채취하여 소아용 배지에 접종합니다).
    • ⑤ 감염성심내막염이나 카테터(catheter)관련 혈관 내 감염과 관련된 지속적 균혈증에서는 시차를 두고 채혈하는것이 추천됩니다. 감염성심내막염은 혈액배양 양성률이 90% 이상으로 급성심내막염인 경우 병원성이 강한 균주에 의한 것이 많으므로 즉시 혈액배양을 시행하는 것이 좋으며, 항균제 투여 전 30분 이내에 채혈합니다.
  • 02 객담(sputum)
    • ① 객담은 폐렴의 원인균을 진단하기 위해서 사용하며, 아침에 일어나 양치한 후 큰기침을 하여 무균컵에 채취합니다. (객담을 받을 수 없는 소아환자는 흡인으로 채취합니다).

    • ⓐ 맑은 물로 세척합니다.

      ⓑ 심호흡을 3회 실시하여 폐 깊숙히 있는 가래가 나올 수 있도록 합니다.

      ⓒ 깊은 기침을 하여 객담을 받으며, 침이 섞이지 않도록 주의합니다.

    • ② 침이 많이 섞이면 구강 내 상재균이 많이 포함되어 정확한 결과를 얻기 힘드므로, 검사실에서 객담도말 표본을 그람 염색하여 100배 시야에서 상피세포와 백혈구를 관찰하여 객담의 품질을 판정합니다. (Murray와 Washington 변법에서는 두 가지 세포 수의 비율에 따라 6개의 군으로 나누며, 객담의 품질 등급에 의해 4~6등급은 수용되며, 1~3등급은 부적합 검체로 판정합니다.)
    • ③ 검체는 채취 후 즉시 검사실로 운반하며, 지연될 경우에는 냉장 보관해야 합니다.
  • 객담의 품질 등급(grade of sputum quality)
    Grade Number of cell / Low-power field
    Epithelial cell WBC
    1 ＞ 25 ＜ 10
    2 ＞ 25 10~25
    3 ＞ 25 ＞ 25
    4 10~25 ＞ 25
    5 ＜ 10 ＞ 25
    6 ＜ 10 ＜ 10

    Acceptable sputum: Grade 4, 5, 6 / Unacceptable sputum: Grade 1, 2, 3

  • 03 체액(body fluid)
    • ① 뇌척수액(CSF)
    • · 무균적으로 3개의 용기에 채취하며, 그 중에 2번째 채취한 뇌척수액을 미생물 검사용으로 사용합니다. · 채취 후에는 즉시 밀봉하여 검사실로 보내야 하며, 검사가 지연이 되면 실온 보관합니다.
    • ② 기타 체액(관절액, 흉수, 복수 검체 등)
    • · 단 한 개의 집락이 자라도 의미가 있으므로 검체채취 시 오염되지 않도록 하며, 주사기로 흡인 후 무균 상태로 보관합니다. · 시험관으로 옮기면 혐기성세균이 사멸할 수 있으므로 주의를 요합니다.
  • 04 분변(stool)
    • ① 변에 혈액, 점액이 섞여 있는 부분을 선택적으로 약 1~2g 정도를 채취합니다.
    • ② 변을 채취할 수 없을 때는 면봉을 항문 괄약근 1인치 정도까지 넣어 부드럽게 회전시켜 검체를 얻은 후, 수송배지에 넣어 보관합니다.
    • ③ 장염 세균을 검사하기에 가장 좋은 검체는 급성기에 채취한 설사변으로 검체 유출로 인한 오염 가능성이 있으므로 완전하게 밀봉합니다.
    • ④ 장티푸스균의 분리는 감염 후 2~3주의 변에서 2~3회 반복하여 검사할 경우 양성률을 높일수 있습니다.
    • ⑤ 설사 증세를 보이면서 항균제 사용력이 있는 연령 6개월 이상의 모든 환자에 대하여 C.difficile toxin 검출을 위해 액상이거나 부드러운 변을 용기에 받아 C. difficile toxin 검사를 시행합니다. (면봉 검체는 적합하지 않습니다).
    • ⑥ 직장도말 검사로 성매개감염(sexually transmitted disease,STD)를 위한 검체는 실온에 보관합니다.
    • ⑦ 바륨 관장을 한 대변으로는 검사하지 않습니다.
  • 05 요(urine)
    • ① 아침 첫뇨가 가장 적합하며, 세균배양을 하기 위해서는 환자의 요도 주위를 잘 소독한 후 처음몇 mL을 버리고 중간뇨 10.0mL 정도를 무균적으로 채취합니다.
    • ② 카테터뇨는 소변을 볼 수 없는 환자나 무균 조작이 반드시 필요한 환자에게서만 시행합니다.
    • ③ 혐기성배양 시 치골 결합부에서의 흡인뇨(suprapubic aspiration)를 무균적으로 채취합니다.
    • ④ 항산성균 배양시 아침 첫 뇨를 계속해서 3~5일간 채뇨하는 것을 원칙으로 합니다.
    • ⑤ 반드시 멸균용기에 채취한 후 30분 이내에 보내야 하며, 부득이한 경우에는 반드시 냉장 보관 하고 채뇨 시간을 기록합니다. (Neisseria 균속이 의심되는 검체는 30℃ 이하로 내려가면 사멸 하므로 실온이나 37℃에 보관합니다).
  • 06 농(pus)
    • ① 주사기로 흡인하여 채취하는 것이 원칙이며, 채취 후 즉시 밀봉합니다.
    • ② 주사기로 흡인액을 얻지 못하는 개방된 농인 경우에는 두 개의 면봉으로 병소 깊이 채취하여 수송배지에 넣어 보냅니다.
  • 07 생식기 검체
    • ① 여성 생식기 : 자궁경관에서는 질 내의 세균이 오염되지 않게 하면서, 윤활제를 쓰지 않고 질경(speculum) 을 이용하여 자궁경부를 보이게 한 다음 면봉으로 점액을 제거한 후 새로운 면봉을 사용하여 자궁경부내강(endocervical canal)에 넣어 검체를 채취 후 수송배지에 넣습니다.
    • ② 남성 생식기 : 요도 검체는 분비물이 많을 때는 면봉으로 채취하고, 적을 때는 요도의 2cm 깊이까지 가느 다란 면봉을 넣어 채취 후 수송배지에 넣습니다.
  • 08 조직(tissue)
    • 조직 검체는 멸균용기에 멸균 식염수를 넣거나 멸균 식염수를 적신 거즈로 싸서 마르지 않게 검사실로 보냅니다.
  • 09 혐기성세균 배양을 위한 검체
    • ① 혐기성세균은 공기에 노출되면 사멸되기 쉬우므로 검체의 수송 및 채취가 중요하며, 산소에 노출되는 것을 막기 위해서는 CO2나 N2 가스를 채운 시험관이나 병 등을 사용합니다.
    • ② 흡인했을 때는 주사기에서 공기를 배출시킨 후, 마개로 막고 즉시 검사실로 보냅니다. 혐기성 세균이 정상상재균으로 존재하는 검체(객담, 요, 대변, 인두액 등)는 혐기성 배양을 하지 않고 주로 체액, 농, 경기관 흡인액, 생검 조직 및 혈액 등을 대상으로 합니다.

01검체채취

바이러스 배양법은 원인 바이러스가 자랄 수 있는 가장 specific한 세포를 사용하므로 검체 또한 감염 병소에서 채취하며, 일반적으로 질병 경과가 길수록 바이러스 검출률은 낮아지므로, 바이러스 농도가 높은 감염 초기에 채취하는 것이 좋습니다. 주로 이용하는 검체는 체액, 삼출액, 조직, 상기도 세척액, 분변, 요 등입니다.

02검체운송 방법

바이러스 운송 배지(VTM)에는 세균의 증식을 억제하는 성분이 함유되어 있으며, 채취 즉시 검사실로 보내어 검사를 해야 하나, 만약 그렇지 못한 경우에는 2~3일 이내에 검사가 이루어져야 합니다.

03보관 및 주의사항

장기간 보관 시에는 -70℃에 냉동 보관하며, 반복 해동 시 바이러스 역가가 감소할 수 있습니다.
전혈 검체는 토요일이나 주중 공휴일 전날 접수되지 않도록 주의하시기 바랍니다.
  • 바이러스 배양검사 검체별 안내
    검체종류 채취 및 검체량 검체용기 주의사항
    Stool 3~5g (설사변일 경우 5g) 멸균용기 · 발병 후 4일 이내 검체채취 · 수막염은 발병 후 2주까지의 검체가능 · 기저귀 착용 시 대변을 긁어서 보냄
    Urine 5.0mL (신생아: 2.0~3.0mL) CMV 배양의 경우 VTM 용기 사용
    CSF 3.0~5.0mL 혈액이 혼입된 검체는 혈액 내에 존재하는 항체가 바이러스 배양을 억제
    Rectal swab 면봉을 직장 내 2~4cm 부위에서 rub and rotation 방법으로 채취 대변을 채취하지 못할 경우 사용
    상부호흡기 ① 비인후흡입액
    ② 비인후도찰물
    ③ 인후도찰물 바이러스 분리율
    ① ＞ ② ＞ ③    		 · 발병 후 수 일 이내에 채취 · 인후도찰물 보다는 비인후흡입액이 오염이 적어서 좋음
    하부호흡기 · 기관지흡입물 · 기관지세척액 · 발병 후 수 일 이내에 채취 · 객담도 사용할 수 있으나 흡입하는 것보다 효율성이 떨어짐
    Skin, Mucous
    membrane lesion    		 수수포(vesicle)를 26 gauge 주사침이나 uberculin syringe 또는 면봉을 사용하여 채취 · 비궤양성 병소일 경우 면봉을 사용하여 병소 부위를 지른 후 수송배지에 넣음 · 주사기 이용 시 수송배지에 넣음 (흡인 및 배출과정 반복)
    Eye 결막 : · 면봉을 소독된 생리 식염수에 적신 후체채취 · 두 번째 면봉으로 남아있는 물기를 제거 운송배지에 사용된 면봉 모두를 넣음
    Cervical urethral 면봉검체 사용 -
    Saliva 2.0~3.0mL -
    Semen - CMV 배양에 주로 이용
    Blood 전혈 5.0~8.0mL Heparin, Sod.citrate -
  • 01 비인후흡입액 & 비인후도찰물(nasopharyngeal aspirate & nasopharyngeal swab)
    • ① 만약 어린 소아에서 인두 도말이 용이하지 않을 경우 그림 A, B와 같은 요령으로 비인후도말 또는 비강흡입물 채취 검체로 대신할 수 있습니다
    • ② 비인후도말 시 멸균면봉을 하비갑개의 중하부 근처에서 점막을 부드럽게 3-4회 돌려서 채취 합니다.
    • ③ 비강흡입물 채취 시에는 비강을 통하여 카테터 끝이 인두 후벽까지 다다르게 한 다음 진공 흡입을 걸고 카테터를 약간씩 돌리며 천천히 부드럽게 빼내면 됩니다. 진공흡입 후 카테터가 비인후부에 10초 이상 길게 머물지 않도록 주의합니다.
    • ④ 카테터를 멸균 생리식염수(약 1㎖)로 세척하여 무균용기에 담습니다.
    • ⑤ 비인후흡입액(nasopharyngeal aspirate) 3~5mL을 무균용기에 넣고, 비인후도찰물 (nasopharyngeal swab)은 VTM 용기에 넣어 4℃ 냉장 상태에서 보관 후 운송(운송 시내부온도 4℃ 유지) 합니다.
  • 02 인후도찰물(throat swab)
    • ① 환자의 입을 벌리고 반드시“아-"하는 소리를 실제로 내게 합니다.
    • ② 왼손으로 설압자를 잡고 설압자로 혀를 누릅니다.
    • ③ 오른손에 멸균면봉을 잡고 인두 후벽을 면봉으로 360°로 3~4회 돌려 도말합니다. 이때 환자 목젖을 건드리면 환자가 구역질을 하게 되므로 목젖을 피해서 도말을 합니다.
    • ④ 채취한 인후도찰물(throat swab)은 VTM 용기에 넣어 4℃ 냉장상태에서 보관 후 운송(운송 시 내부온도 4℃ 유지) 합니다.

가. 유전학검사

01유전자검사 동의서

  • 01 생명윤리 및 안전에 관한 법률」 제51조 제1항 및 제3항에 의거하여 유전자 검사기관에 유전자 검사를 의뢰할 때에는 검사대상자(또는 법정 대리인)로부터 소정의 서면동의를 받도록 규정하고 있습니다.

  • ※ 유전자검사기관의 유전자검사 동의서(질병관리본부)에 대한 안내사항

    · 유전자검사기관 외의 자가 검사대상물을 채취하여 유전자검사기관에 유전자검사를 의뢰하는 경우에는 1항에 따라 검사대상자로부터 서면동의를 받아 첨부하여야 하며, 보건복지부령으로 정하는 바에 따라 개인정보를 보호하기 위한 조치를 하여야 한다. (「생명윤리 및 안전에 관한 법률」제51조 제1항 및 제3항) · 유전자검사기관 외의 자가 유전자검사기관에 유전자검사를 의뢰할 때에는 제2항에 따른 동의서에서 성명, 년월일 등 검사대상자 개인을 식별할 수 있는 사항을 삭제하여야 한다.
    (「생명윤리 및 안전에 관한 법률 시행규칙」제51조 제3항)         · 제56조 제1항에 따라, 제51조 제1항부터 제4항까지의 규정을 위반하였을 경우 1년 이내의 업무정지 등의 정처분 또는 제68조에 따라, 제51조제2항, 제3항을 위반한 경우 1년 이하의 징역 또는 2천만원 이하의 벌금에 처한다. (「생명윤리 및 안전에 관한 법률」제56조 제1항, 제68조 제11항)
  • 02 질병관리본부 안내사항에 따라 유전자검사 의뢰 시 유전자검사 동의서가 첨부되지 않은 검사에 대해서는 처벌의 대상이 되므로 검사를 시행할 수 없으며 유전자검사 동의서에 검사대상자의 성명, 생년월일, 전화번호 등 개인식별정보를 삭제 또는 암호화하여 첨부하여 주시기 바랍니다.
  • 03 본원에서 시행하는 유전자 검사뿐만 아니라 재 위탁하는 유전자검사도 검사대상자의 서면동의서를 반드시 첨부하여 주시기 바랍니다.

나. 염색체검사

01준수사항

  • 01 검체는 무균적으로 채취하며 보관 및 운송은 실온 상태로 합니다.
  • 02 검체채취부터 배양까지 24시간 이내에 진행될 수 있도록 운송합니다(검사 지연 시 냉장 상태로 보관).
  • 03 의학유전체(분자·세포유전)검사의뢰서, 유전자검사 동의서를 기재하여 검체와 함께 보냅니다.
  • 04 태아를 대상으로 하는 염색체 검사는 검체채취 전 검사의 정확성 및 검사한계에 대해 환자나 보호 자에게 충분히 설명하여 동의를 얻은 후에 검사를 시행하는 것이 바람직합니다.

02검체별 채취 방법

  • 01 말초혈액(peripheral blood, PB)
    • ① Sodium heparin 용기에 혈액 5.0mL(소아 3.0mL)을 무균적으로 채취합니다. 응고된 검체는 검사가 불가능하며 sodium heparin 이외의 항응고제는 세포분열능 저하로 인하여 배양 실패 확률이 높습니다.
    • ② 환자의 임상소견 및 추정 진단에 따라 검사방법 자체가 달라지므로 반드시 의뢰서에 소견 및진단명을 기재합니다.
    • ③ 검체채취부터 배양까지 24시간 이내에 진행될 수 있도록 운송합니다.(24시간 이내의 경우 세포분열능이 좋아 검사소요일 내 보고율이 높으며, 24시간 이상일 경우 냉장 보관합니다).
    • ④ 검체보관 및 운송은 실온 상태로 유지합니다.
  • 02 골수(bone marrow, BM)
    • ① 본원에서 제공하는 전용 운송용 배지 또는 sodium heparin 용기에 골수를 무균적으로 채취 합니다. 응고된 검체는 검사가 불가능합니다.
    • ② 환자의 임상소견 및 추정 진단에 따라 검사방법 자체가 달라지므로 반드시 의뢰서에 소견 및진단명을 기재합니다.
    • ③ 혈액종양에서는 세포 배양 시 혈액검사(CBC) 결과를 고려해서 적절한 세포 수가 되도록 배양 해야 하므로 귀원에서 시행한 혈액검사(CBC) 결과를 기재하거나 첨부하여 보냅니다.
    • ④ 검체채취부터 배양까지 24시간 이내에 진행될 수 있도록 운송합니다(24시간 이내의 경우 세포 분열능이 좋아 검사 소요일내 보고율이 높으며, 24시간 이상일 경우 냉장 보관합니다).
    • ⑤ 검체보관 및 운송은 실온 상태로 유지합니다.
  • 03 양수(amniotic fluid)
    • ① 검체에 모체세포가 혼입되는 것을 방지하기 위해 채취 시 처음의 소량(약 2.0mL 정도)은 반드시 버린 다음 약 20.0~30.0mL 정도의 양수를 채취하여 무균용기(50.0mL 용)로 옮겨 의뢰합니다.
    • ② 결과 지연 및 배양 실패 이유
    • · 혈액이 혼입되어 육안적으로 검체의 색깔이 붉거나 짙은 갈색의 경우 · 양수 내 태아 유래 세포가 적은 경우(원심 후 침전물이 육안으로 확인이 안 됨)
  • 04 태아조직(production of conceptus, POC)
    • ① 태아조직의 경우 오염될 확률이 매우 높아 주의가 필요합니다.
    • ② 무균적으로 채취한 조직을 본원에서 제공하는 전용 운송용 배지에 넣어 의뢰합니다.
    • ③ 자궁 내에서 사망한지 24시간 이상이 경과한 검체는 배양에 실패할 확률이 높습니다.
  • 05 융모막(chorionic villi sampling, CVS)
    • ① 융모막 20~40mg을 채취하여 본원에서 제공하는 융모막 전용 운송용 배지에 넣어 의뢰합니다.
    • ② Zoom-stereo 현미경으로 관찰하여 순수한 융모막으로 검사를 시행합니다.
    • ③ 융모막의 양이 충분할 경우 직접법(in situ)와 플라스크 방법을 병행합니다.
    • ④ 융모막의 양이 적을 경우 플라스크 방법만을 시행하기 때문에 모체 세포의 오염 가능성이 높아지고 결과가 지연되거나 혹은 배양에 실패할 수도 있습니다.
  • 06 제대혈(cord blood)
  • 제대혈(cord blood) 검체는 응고가 잘 되므로 채취 후 sodium heparin 용기에 넣어 즉시 여러 번 혼합하여 의뢰합니다.

다. 분자진단검사

01준수사항

  • 01 분자진단검사에서 가장 중요한 것은 적절한 검체와 오염의 방지입니다.
  • 02 모든 혈액 및 골수를 이용하여 PCR 검사를 의뢰하고자 할 경우 원칙적으로 EDTA blood를 사용 합니다. (항응고제 중 heparin은 Taq. polymerase의 활성화를 억제하여 검사 불가능)
  • 03 조직을 의뢰하는 경우 포르말린 고정 없이 멸균 식염수에 넣어 의뢰합니다.
  • 04 다른 검사와 같이 의뢰된 검체는 PCR 전용용기에 따로 구분하여 보내며 멸균용기를 사용합니다.
    • ① Hepatitis virus 관련 검사는 SST 사용을 원칙으로 합니다.
    • ② Human papilloma virus 관련 검사는 반드시 각 종목에 해당되는 전용용기를 사용합니다.
  • 05 유전질환이나 기타 신중을 요하는 검사는 반드시 의학유전체(분자·세포유전)검사의뢰서, 유전자 검사 동의서를 첨부합니다.
  • 06 RNA virus를 의뢰한 검체 중 용혈 된 검체는 검사결과가 불안정하므로 용혈에 주의하여 주시기 바랍니다.

02비침습적 산전기형아검사 (non-invasive prenatal test)

  • 01 Cell-free DNA 용기
    • ① 산모 혈액을 cell-free DNA 용기에 8.5mL채혈합니다.
    • ② 검체를 위아래로 8~10회 천천히 회전하여 섞은 후 실온에 보관 (냉장 보관 시 검체 용혈 검사불가) 합니다.
    • ③ 검체는 필수 서류와 함께 용기 봉투에 넣은 후 실온 상태로 검체를 발송합니다.

가. 세포병리

01준수사항

  • 01 세포병리 검사용 검체는 세포 변성을 방지하기 위해 95% 에탄올로 반드시 고정합니다.
  • 02 95% 에탄올로 고정하는 경우 적어도 30분 이상 고정해야 합니다.
  • 03 95%에탄올 고정액은 2~3일에 한번씩 교체 해주어야 합니다.

02검체별 채취방법

  • 01 부인과 세포검사(gynecological cytology)와 자궁내막 세포검사(endometrial cytology)
    • ① 채취부위: 자궁질부(portio vaginalis), 자궁경부(uterine cervix), 자궁내막(endometrium)
    • ② 부인과 검체의 경우 자궁 경부의 변형대(Squamo-Columnar junction)이나 질의 후원개 (Vaginal posterior fornix)에서 brush로 돌리면서 채취합니다.
    • ③ 검체채취 시 기구나 장갑에 윤활제 또는 탈컴파우더(talcum powder)를 사용하지 않고, 수분이 필요한 경우는 따뜻한 생리식염수(warm saline)를 사용합니다.
    • ④ 검체는 cyto brush를 이용하여 한 번에 많이 채취한 후 슬라이드에 얇고 균일하게 도말하고, 도말 즉시(0.5초의 지체없이) 95% 에탄올에 고정하거나(최소 30분 이상) 세포 고정제를 분무합니다.
    • ⑤ 검체채취 하루 전에는 질 내 치료나 피임약제 등의 사용을 하지 않아야 하며, 채취 전 외상 치료나 biopsy등을 행하면 혈액의 RBC가 슬라이드에 도말되어 판독이 어려워 집니다.
    • ⑥ Pap brush나 cyto brush로 검체를 채취할 경우 심한 출혈이 발생하지 않도록 주의합니다. (과도한 혈액 혼입은 진단에 방해를 줄 수 있습니다)
    • ⑦ 면봉은 사용하지 않습니다.
    • ⑧ 액상세포 검사용기를 사용하는 경우 cyto brush로 채취한 모든 세포를 액상용기 안의 액체에 풀어 넣은 다음, 새지 않게 뚜껑을 잘 밀봉하여 보냅니다.
  • 02 점액성 검사물 객담 또는 호흡기계 검사물(sputum or respiratory specimen)
    • ① 객담(sputum)세포들이 점액내에 섞여 있는 검사물로서 폐포로부터 나오는 객담을 환자 스스로 받는것이 가장 좋습니다.
    • ② 아침 첫 객담을 받아 병적(변색, 짙은 갈색, 혈액 등) 부분을 두 장의 슬라이드 사이에 넣고, 전·후·좌·우로 비벼 펼친 다음 즉시 95% 에탄올에 고정합니다.
    • ③ 채취 시 타액이 섞이지 않도록 주의하고 객담 자체를 의뢰하실 경우 냉장보관하여 24시간 이내에 본원으로 보냅니다.
  • 03 요, 뇌척수액(urine, CSF) 등 protein양이 적은 검체
    • ① 요의 경우 채뇨 시 중간뇨를 소변컵에 절반 이상 받습니다.
    • ② 아침 첫뇨는 퇴행성 변화가 심하고 농축되어 적당하지 않습니다.
    • ③ 1,500rpm에서 10분간 원심분리하여 침전물을 슬라이드에 도말한 후 고정합니다.
    • ④ 원심분리가 불가능할 경우 검체에 50% 에탄올(ethyl alcohol)을 검체의 양과 같은 양으로 혼합하여 보냅니다.
  • 04 체액(body fluid)
    • ① 흉수액(pleural fluid), 복수액(ascitic fluid), 심낭액(pericardial fluid) 등을 의미합니다.
    • ② 채취 부위에 천자 바늘을 삽입하며 위치가 확인되면 고정하고 수액 set를 연결하여 빈병에 배액되게 합니다.
    • ③ 검체에 에탄올이나 포르말린을 섞어서는 안됩니다.
    • ④ 가능한 전량을 1,500rpm에서 15분간 원심분리한 후 도말하고, 즉시 95% 에탄올에 고정합니다.
    • ⑤ 도말이 불가능한 때는 검체를 냉장 보관하여(24~48시간 보관가능) 본원으로 보냅니다.
  • 05 세침흡인세포검사(fine needle aspiration)
    • ① 유방(breast), 갑상선(thyroid), 림프절(lymphoid tissue), 기타(other) 촉지 종괴 등을 촉지 하여 가장 의심스러운 부위를 선택하여 채취합니다.
    • ② 2~4장의 슬라이드에 도말한 후 건조되지 않도록 신속하게 95% 에탄올에 즉시 고정합니다.
    • ③ 검체량이 적은 경우는 주사바늘과 주사통을 생리식염수로 세정하고 그 내용물을 채취, 원심분 리하여 침전물 슬라이드에 도말 한 후 95% 에탄올로 즉시 고정합니다.

나. 조직병리

01준수사항

  • 01 조직은 신체에서 제거되면 자가융해(autolysis)가 시작됩니다. 자가융해 및 부패에 의한 변형 또는 변질을 막기 위해 조직의 고정이 반드시 필요합니다.
  • 02 조직을 새지 않는 용기에 옮긴 후 10% 중성 포르말린(Formaline)을 조직 크기의 10~20배 첨가한 다음, 실온에서 12시간 이상 고정합니다.
  • 03 포르말린을 사용하는 목적은 적출한 조직의 자가융해 및 건조를 방지하기 위함입니다.
  • 04 적출한 조직에 필요 없는 조작은 피해주시고, 조직을 담는 용기에는 환자의 이름, 나이, 성별, 병원명 등의 정보를 기입하여 의뢰하여 주십시오.
  • 05 채취부위가 다른 조직이거나 여러 부위에서 적출된 조직일 경우, 부위별로 각각 다른 용기에 넣어 고정하여 보내주십시오.
  • 06 Punch biopsy등의 작은 생검조직은 번호별로 거즈나 여과지에 붙여 유실되지 않도록 한 후 고정 하여 보내주십시오.
  • 07 적출된 조직에 불필요한 조작은 가능하면 삼가하여 주시고, 건조되지 않도록 고정액을 충분히 넣어 주십시오.
  • 08 검체 용기는 가급적 본 재단에서 공급하는 용기를 사용하여 주십시오.

※ 조직병리 검사의뢰서 작성

검사의뢰서에는 환자의 이름, 생년월일, 성별, 병원명 및 등록번호, 의뢰날짜, 적출부위를 기록하여 주십시오.
또한, 환자의 병력 및 임상진단을 함께 기록하여 주시면 정확하고 빠른 진단에 큰 도움이 됩니다.

02검체별 고정방법

  • 01 큰 장기(장기적출술 예: 자궁, 유방, 위장관 등)
  • 절단면을 용기의 아래쪽으로 넣고 고정액에 조직 전체가 충분히 잠기도록(가능하다면 검체의 10~20배부피)넣어 주십시오.
  • 02 소화관(내시경적 점막 절제의 경우)
  • 점막 부위를 위로 오도록 하여, 점막 부위를 밖으로 뒤집어 스티로폼 등에 편평한 상태를 유지하 도록 펴서 핀 등으로 고정한 후 포르말린에 담가서 보내주십시오.
  • 03 작은 생검조직(예 : 위장관의 내시경적 생검, 자궁경부 생검, 유방 생검 등)
    • · 생검조직을 얇은 거즈나 여과지에 붙이거나 싸서 그대로 포르말린에 넣어 보내주십시오.
    • · 포르말린에 넣기 전 조직의 수분을 제거해야 하나, 조직이 너무 작으므로 건조되지 않도록 주의 해야 합니다.